HPV：人乳头瘤病毒检测的研究进展

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【关键词】 宫颈癌;人乳头瘤病毒，HPV
宫颈癌是常见的妇科恶性肿瘤之一，发病率在女性恶性肿瘤中居第二位，仅次于乳腺癌[1]。近年宫颈癌的发病呈上升趋势以及年轻化趋势[2]。人类首次发现人乳头状瘤病毒(HPV)，是一种可致软疣的病毒，后来被国际癌症研究中心定为致宫颈癌及其相关病变的关键因素[3]，在99.7%宫颈癌中可检出HPV[4]。HPV是人类致瘤病毒中最具有多样性的一类，至今已鉴定出一百多型，世界卫生组织2005年公布了15种型别HPV有致癌性[5]，主要导致宫颈浸润癌[3]：HPV16、HPV18、HPV31、HPV33、HPV35、HPV39、HPV45、HPV51、HPV52、HPV56、HPV58、HPV59、HPV68、HPV73和HPV82，称为高危型HPV。Zuan等[6]的研究认为宫颈上皮高度病变合并HPV16、HPV18、HPV33或HPV45型感染时则会大大提高病变进展为宫颈癌的可能性。在人宫颈癌标本中HPV-DNA的检出率可高达99%，其中HPV-16、HPV-18阳性率分别为60%、14%[7]，因此对感染进行准确的检测可提高宫颈癌前病变筛查的敏感性。现就国内外对HPV检测方法的研究进展综述如下。

　　1 HPV 检测方法

　　1.1 传统的细胞学检测方法

　　1.1.1 细胞学检查 细胞学技术是检测HPV感染的一种简便而经济的方法，常用于HPV的过筛检查。它通过HPV感染所致宿主细胞发生的形态学改变而推断HPV感染的发生，临床上应用较多的方法是传统的巴氏涂片法，但由于其局限性已逐渐被美国国立癌症研究所提出的Bethesda系统报告方式所取代。

　　1.1.2 液基细胞学 液基细胞学检测改变了常规涂片的操作方法，标本取出后立即装入有特殊细胞保存液的容器中，几乎保留了取材器上的所有细胞，经高精密度滤器过滤制成均匀薄层涂片，在薄片中不正常的细胞容易被观察，并且湿固定的细胞核结构清晰易于鉴别。而在Pap涂片中假阴性高达53%～90%[8，9]，产生原因除病变细胞没有取到外，主要有以下两种原因：①取材器上的病变细胞没有被转移到载玻片上;②涂片质量差，不均匀过厚，过多黏液、血液或炎症细胞遮盖了不正常的细胞，有40%的涂片因质量影响正常诊断[10]。液基细胞学检测与Pap涂片技术相比，使发现低度病变的敏感度提高10%～15%。

　　1.1.3 组织病理学检查 大多数病理学家认为“挖空细胞”对诊断HPV感染有特异性但并非惟一的诊断依据。如今已发现，“挖空细胞” 作为组织学诊断标准， 其特异度为95.26%、灵敏度为77.93%、假阳性率为4.47%、假阴性率为22.0%。因此，须结合其他镜下形态综合分析以作出正确诊断。

　　2 HPV-DNA检测方法

　　2.1 杂交法

　　2.1.1 传统杂交法 主要是利用放射性核素标记已知的核酸片段。在一定的条件下，与待测的具有一定同源性的核酸片段按碱基互补配对的原则形成双链。常用的HPV-DNA的核酸杂交方法有DNA印迹法、斑点杂交和原位杂交等。DNA印迹法灵敏度高，与聚合酶链反应(PCR)联合，理论上可检测1个病毒/细胞，适用于分型HPV-DNA 分子质量鉴定等，但其过于复杂和繁琐，且必须应用新鲜组织标本，故仅用于实验室研究，目前还不便于临床应用。斑点法操作简单、迅速，特异性强，敏感性高，但原位杂交法敏感性低，临床亦少用。

　　2.1.2 新型杂交法 新型杂交法主要是指第2代杂交捕获技术和导流杂交技术。杂交捕获技术是美国Digene公司最近几年发明的一种检测HPV-DNA的技术，其原理是利用对抗体捕获信号的放大和化学发光信号的检测以诊断HPV感染。到目前为止，杂交捕获技术经历了3个阶段的发展，即杂交捕获技术-1、杂交捕获技术-2和杂交捕获技术-3。杂交捕获第2代技术操作简单，无需基因扩增，重复性好，对高危HPV检测的敏感率高达89%～98%，阴性预测值可达99%[11]，且实验结果客观不受人为和地理条件的限制。杂交捕获技术-2比杂交捕获技术-1更可靠，其检测低限为 HPV-DNA 0.2～1pg/m[12]，由于这段寡核苷酸与HPV-DNA的另一段序列互补，从而减少了非特异性杂交造成的假阳性结果[13]。这种检测方法能特异地检测出靶序列的单个核苷酸的改变，而使检测HPV基因型变异体成为可能。

　　2.2 PCR技术 以PCR为基础的检测方法，是进行HPV-PCR检测及分型的最好方法。PCR技术采用DNA聚合酶催化特异性引物来选择性地扩增靶HPV-DNA。对扩增后的DNA可采用不同的方法进行检测。PCR能检出标本中的10～100个DNA分子，它是目前最为灵敏的方法[14]，主要包括荧光定量PCR[15]、实时PCR、间接原位PCR等。尚有PCR-酶联免疫吸附试验检测、PCR结合双向点杂交技术检测、竞争性定量PCR[16]、单管巢式PCR和直接原位PCR等，都是近几年发展起来的基于PCR的新技术。

　　2.3 基因芯片技术 基因芯片技术是近几年随着人类基因组计划的研究发展应运而生的。它具有多样品并行处理能力、分析速度快、所需样品量少、污染少等优点[17]。另外，基因芯片不仅可用于分型，而且可以对多个型别的混合感染情况同时监控，较杂交捕获法有优势[18]，但基因芯片技术需昂贵的尖端仪器，在软件上也存在一些问题如样品准备复杂、技术较难掌握，且检测的敏感度低。尽管如此，DNA芯片技术作为临床 HPV-DNA 高通量筛查试验具有不可小视的应用前景。

　　3 HPV病毒载量的检测

　　HPV-DNA检测方法采用美国Digene公司研制的HC-Ⅱ系统，其原理是利用免疫学技术并通过化学发光放大抗体捕获的信号，对标本中的病毒进行检测，HC-Ⅱ可以一次检测13种高危型HPV。从而确定RNA-DNA杂交体的含量，分析不同程度宫颈病变的HPV感染情况。

　　4 血清学检查

　　HPV感染的血清学检测包括免疫组织化学法、放射免疫沉淀法、酶联免疫吸附法等。免疫组织化学粒的IgM和IgG抗体。HPV型特异性L1类病毒颗粒酶联免疫吸附试验的灵敏度为50%～60%，特异度超过90%，HPV血清学检测属于分型特异性，用来提示既往或当前感染。但是，因为缺少标准化和重复性，作为过去和(或)现今HPV感染标志检测的血清学试验并未被临床广泛采用。随着免疫学研究的不断深入，在血清中也可检测到一些具有参考价值的指标作为宫颈癌诊断治疗检测及随诊中的标志物。但HPV病毒不能在体外培养增殖，故血清学检查发展缓慢。另外，多数人感染过HPV后均有可能在血清中出现抗体，并非宫颈癌所特有，但HPV抗体联合细胞学检查是有意义的。

　　5 结语

　　HPV基因分型诊断使临床、流行病学的研究更深入化，定期、及时的进行HPV基因分型诊断是预防宫颈癌的有效途径。目前HPV的检测作为宫颈癌的常规初步筛查已逐渐向临床推广，而且由于不同的HPV型别有不同的致病能力，因此发展HPV基因型的分型方法非常重要。传统的HPV检测方法主要是通过形态学及免疫学方法对其检测，但特异性及敏感性均比较低，也不能分型，所以目前主要应用分子生物学方法对HPV-DNA进行检测。目前研究表明[19]，HPV-DNA的病毒载量与HPV的持续感染及宫颈病变进展有关，因此未来理想的HPV检测方法不仅操作简便、快速、价格便宜，而且敏感度和特异度高。

【参考文献】
  　[1] 施胜芳，林玲.美国宫颈癌研究进展[J].国外医学：肿瘤学分册， 1996，23(3)：176.

　　[2] 黄雅，冯玉昆.HPV亚型检测与宫颈癌筛查[J].医学综述，2007，19(13)：1453-1454.

　　[3] Baseman JG, Koutsky LA. The epidemiology of human papilloma virus infections [J]. J Clin Virol ，2005,32(Suppl 1)：S16-S24.

　　[4] 赵方辉，李楠，马俊飞，等.山西省襄垣县妇女人乳头瘤病毒感染与宫颈癌关系研究[J].中华流行病学杂志，2001，22(5)：375.

　　[5] Cogliano V， Bann R， Straif K, et al. Carcinogenicity of human papilloma viruses [J]. Lancet Oncol， 2005， 6(4)： 204.

　　[6] Zuna RE， Allen RA， Moore WE， et al. Distribution of HPV geno-types in 282 women with cervical lesions ： evidence for three categories of intraepithelial lesions based on morphology and HPV type[J]. Mod Pathol， 2007，20(2)：167-174.

　　[7] Spano JP， Marcelin AG， Carcelin G. HPV and cancer [J].Bull Cancer，2005，92(1)：59-64.

　　[8] Joseph MG, Cragg F， Wright VC， et al. Cytohisto logical correlates in a colposcop ic Clinic： al- year prospective study [J]. Diagn Cytopathol，1991(7)：477- 481.

　　[9] Kristensen GB, Skyggbjerg KD, Holund B, et al. Analysis of cervical smears obtained with in three year s of invasive cervical cancer [J]. Acta cytol,1991(35)：47-50.

　　[10] Davery DD, Nielsen ML, Rosenstock W, et al. Terminology and specimen adequacy in cervical cy tology; the college of American pathologists in terlaboratory comparison program experience [J]. Arch pathol Lab Med,1992 (116)：903-907.

　　[11] Levert M, Clavel C, Graesslin D, et al. Human papillomavirus typing in routine cervical smears ： results from a series of 3778 patients [J]. Gynecol Obstel Fertil N, 2000,28(10) ：722-728.

　　[12] Schneider A, Hoyer H, Lotz B, et al. Screening for highgrade cervical intraepithelial neoplasia and cancer by testing for highrisk HPV, routine cytology or colposcopy [J]. Int J Cancer,2000,89(6)：529-534.

　　[13] Castle PE, Lorincz AT, Scott DR, et al. Comparison between pro-totype hybrid capture 3 and hybrid 2 human papillomavirus DNAassays for detection of highgrade cervical intraepithelial neoplasisa and cancer[J]. Clin Microbiol, 2003,41(9)：4022-4030.