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蛋白凝胶染料随心选,不止是考马斯蓝

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发表于 2015-10-26 12:32:19 | 只看该作者 回帖奖励 |倒序浏览 |阅读模式
导语:与DNA凝胶电泳一样,蛋白质凝胶电泳也是实验室中稀松平常的工作。无论是Western blot还是质谱分析,都离不开蛋白电泳。研究人员通过大小(1D)和电荷(2D)来分辨蛋白质。当然,仅仅分离蛋白是不够的,它们必须要经过染色。染料的选择有很多,具体选哪种,这取决于灵敏度要求、现有的设备和下游的应用。   C7 v* M% n" @+ z# l
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常规之选
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研究人员主要使用三种染料来处理日常的蛋白凝胶:考马斯蓝、银染和荧光。据Sigma-Aldrich公司蛋白技术的高级研发经理Jeffrey Turner介绍,染料的选择基本上可以归结为“灵敏度 vs. 速度”。7 M2 E4 W* i* s9 h+ ?5 v
考马斯蓝也许是最常用的染料。作为一种可见的显色(亮蓝色)染料,它不需要任何特殊的设备。不过,Bio-Rad的业务开发经理Ning Liu认为,它的灵敏度也最低,检测极限大约在10-100 ng蛋白质。& S5 x: C0 g2 x- z2 Z/ X  H4 y
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很多公司提供不同配方的考马斯蓝染料,它们在使用简便程度、整体染色时间和脱色要求上各有不同。例如,有些需要在乙醇/乙酸中固定,而有些只使用纯水。Expedeon的InstantBlue™试剂可在电泳后直接添加到凝胶中,而不需要固定或脱色,染色可在15分钟内完成。Bio-Rad的QC Colloidal Coomassie Stain操作则建议慢慢来,以便达到更好的效果。整个过程包括在40%乙醇/10%乙酸中固定15分钟,之后染色1-20个小时,再脱色1-3小时。# ?6 Y. \. F0 B7 m
有了赛默飞世尔最新推出的Pierce™ Power Stainer,研究人员可以让考马斯蓝染色自动化。据它的产品经理Emily Goplen介绍,这台设备可对两块凝胶进行染色和脱色。“尽管传统的染色需要几小时甚至过夜,Power Stainer却能在10分钟内完成染色和脱色的过程,并且预制胶和自制胶都适用,”她说。6 H1 Q- r" p% k5 _
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另一种常用方法是银染,每条带的灵敏度大约在0.1-0.25 ng。操作过程没有脱色步骤,但是一个很长的过程,大约在2小时左右,而且相当讲究。此外,据Turner介绍,操作需要用到一些有害的化学物质,如甲醛和银,最好在通风橱中进行。因此,人们一般不大愿意用这种方法,除非灵敏度很重要。$ w5 h6 P/ S. Q

8 ]/ x- i4 j! G- x3 j荧光染料的灵敏度则居中,可检测几纳克的蛋白质,不过你得有一个兼容的凝胶成像系统或透射仪。与考马斯蓝和银染一样,荧光染色通常在电泳后进行,需要固定和脱色,不过也有例外。例如,SYPRO Ruby需要脱色,但Oriole和Flamingo不需要,因为游离的染料不发荧光。“染料本身不会被激光激发,只有当它与蛋白结合时才被激发,”Liu解释道。! f$ W/ t, H: d" `
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除了这些常规的染料,你还有一些特殊的选择。例如,赛默飞世尔为糖基化和磷酸化的蛋白提供了Pro-Q荧光染料,同时也提供InVision™ His-tag In-gel Stain和Lumio™ Green Detection Kit来检测带标签的蛋白。' K0 |2 I, Q" H  y: `3 ^
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升级之选& D7 N, k$ |% M) ]7 W# d" k- I/ z
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有些染料则让你省去了电泳后的洗涤和染色。比如,Bio-Rad的Stain-Free™预制胶预加了一种与色氨酸结合的“三卤”荧光染料。电泳后,凝胶暴露在紫外线下会激活染料,使其与蛋白质共价结合。据介绍,这种染料的灵敏度与考马斯蓝差不多。( X; e2 ~* z- Q6 F% t. f

9 L7 R7 T8 l: |: V, w( F另一个选择是GE Healthcare的Amersham™ WB系统。有了这个系统,样品在电泳之前与Cy 5荧光基团偶联。据GE Healthcare的资深科学家Åsa Hagner McWhirter介绍,在电泳过程中,游离的染料会跑出凝胶,因此没必要脱色,而且灵敏度在50-100 pg的范围。更方便的是,这个系统在电泳结束后自动对凝胶成像并分析结果。
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$ t1 S& x. W. b  F( c+ s6 iLiu和McWhirter都指出,电泳前染色的方法有一个明显的优点,就是染料与分离后的蛋白共价结合。因此,在后续的步骤中能够观察这些蛋白,特别是在Western blot中,可利用总蛋白的信号来标准化目标蛋白的信号,而不像平常那样用看家蛋白。
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“这种方法明显消除了人们对看家蛋白对照的两个担心,”Liu表示。第一,在不同的实验条件下,看家蛋白的水平有时候会变化。其次,它们的水平可能超出了检测的线性动态范围,使得定量变得复杂。《The Journal of Biological Chemistry》杂志也建议使用总蛋白水平来进行信号强度的标准化。5 b. @4 a- L8 T" S. S1 A

3 e; A$ c. a; L0 g! L6 b: @5 \4 N! O( XMcWhirter认为,预标记也明显提高了凝胶之间的重复性,因为洗涤和染色的步骤难以精确控制。“不同反应间的CV要比在不同溶液中孵育凝胶要低得多,”她指出。事实上,她声称在内部分析14个样品时,Cy5信号的CV大约在5%。“这基本上和移液误差差不多。”
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5 p$ w: t8 j$ V关键考虑2 N* Z  W7 ?: `$ w# @( V& q

" l7 K$ ~7 w" l) X; {& k6 P无论你选择哪种染料,在考虑灵敏度、速度和硬件要求外,你还要考虑下游怎么处理凝胶。若是印迹杂交,研究人员通常不用考马斯蓝染色,因为染料需要固定的步骤,会将蛋白困在凝胶里。他们要么平行跑一块相同的胶,要么在转印之后对印迹膜染色。同样,与蛋白共价结合的染料有可能干扰抗体结合或质谱分析。: w% w% a; M1 }( @1 L+ R/ a

/ p% U5 v* p8 w& n* x当然,并没有一个放之四海而皆准的解决方案。考马斯蓝是大多数研究人员的首选染色,但在特殊情况出现时,我们还是有很多其他的选择。
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- O! z3 ~, U9 e3 @3 s8 t' s4 r本文来源:生物通
* Y! q: {* u) `! qhttp://www.ebiotrade.com/8 l* V& m* ]  }: V! K2 |- Q
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沙发
发表于 2016-1-15 23:41:14 | 只看该作者
InVision™ His-tag In-gel Stain是用于检测含有his标签的蛋白吗?
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